돼지 번식군 내 마이코플라스마 하이오뉴모니아에(Mycoplasma hyopneumoniae; 유행성 폐렴) 상태를 분류하기 위한 표준화된 체계가 개발되었다; 통제되지 않은 양성(I), 통제된 양성(II), 잠정 음성(III), 음성(IV). 이는 돈군의 노출 및 배출 상태를 판단하기 위한 일련의 진단 지침을 정의함으로써 이루어졌다. 이 분류 체계는 마이코플라스마 하이오뉴모니아에의 역학적·생태학적 특성에 기반하며, 현재 현장에서 시행 중인 통제 및 근절 관행을 반영한다. 학계, 산업계, 돼지 수의사, 미국돼지수의사협회(AASV), 국가돼지고기위원회대표로 구성된 작업 그룹이 개발하였으며, 2019년 10월 2일 AASV 이사회에서 승인되었다. 명확하고 간결한 용어 사용은 모든 이해관계자 간 의사소통을 용이하게 할 것이다. [논문 원문(바로보기), Establishing Mycoplasma hyopneumoniae herd status classification criteria for breeding herds, Maria J. Clavijo(Iowa State University), AASV, 2020] 번역 돼지와사람(pigpeople100@gmail.com)
장기간의 PCV2 감염 및/또는 PCV2a 및 PCV2b 유전자형의 동시 감염은 '돼지 써코바이러스 관련 질병(PCVAD)'의 임상 발현에 영향을 미칠 수 있다. 이 가설을 평가하기 위해 11주령 SPF(특정 병원체 무균) 돼지 24마리를 4가지 처리군에 무작위로 배정했다; 음성 대조군, PCV2a 1회 접종, 1회 접종 후 동종 PCV2a 균주 재접종, 또는 이종 균주(PCV2a, PCV2b) 반복 접종. 돼지는 접종 후 140일(dpi)까지 매일 임상증상을 평가했다. 혈청 샘플은 dpi 0에서 14까지 이틀에 한 번씩 채취했고 그 이후에는 매주 채취했다. PCV2 접종 돼지는 dpi 2까지 바이러스혈증을 보였고, 18마리 중 13마리는 140dpi에서도 바이러스혈증을 유지했다. 처치군 간에 PCV2 바이러스혈증의 발병, 수준 또는 기간에 통계적 차이는 관찰되지 않았다. PCV2 항체는 14일에서 28일 사이에 검출되었고, 140일째까지 존재했다. 처치군 간 항체 반응에는 통계적 차이가 없었다. 본 연구에서 돼지는 높은 수준의 PCV2 항체가 존재함에도 불구하고 검출 가능한 조직 PCV2 항원 수치와 함께 장기간 바이러스혈증을 보였지만, 임상적 질환은 관찰
다양한 이유 전략(weaning strategies)이 'PRRS 바이러스(PRRSV)'의 하류순환(downstream; 사육단계별 전파)에 미치는 영향은 널리 알려져 있지 않다. 그러나 서로 다른 연령대의 돼지를 혼합하면 자돈사 구역에서 PRRSV 순환 위험이 증가하는 것으로 알려져 있다. 본 연구에서는 이유 시 혼합(MIX)을 시행한 세 농장과 이유 시 모두 전입/전출(AIAO)을 시행한 세 농장의 돼지를 대상으로 시료를 채취하였다. MIX는 저체중 자돈을 2주 동안 별도 시설에 다시 넣고 이후 배치에서 새로 이유한 자돈과 함께 자돈사로 옮기는 것을 포함한다. 각 농장의 네 배치의 돼지로부터, 이유부터 30kg까지 세 번씩 구강액 샘플을 채취하여 PRRSV 및 PRRSV 항체 검사를 실시했다. 이유 시 혼합(MIX)을 시행한 무리는 AIAO를 시행한 무리에 비해 구강액에서 PRRSV 검출 위험이 8배 높았다. MIX 무리의 8개 배치에서 채취한 총 41개의 구강액 샘플과 AIAO 무리의 2개 배치에서 채취한 5개의 구강액 샘플에서 PRRSV 양성 반응이 나왔다. 이유돈의 구강액 샘플에서 PRRSV ELISA S/P 비율은 AIAO 무리의 대부분 배치에서
다양한 이유 전략(weaning strategies)이 'PRRS 바이러스(PRRSV)'의 하류순환(downstream; 사육단계별 전파)에 미치는 영향은 널리 알려져 있지 않다. 그러나 서로 다른 연령대의 돼지를 혼합하면 자돈사 구역에서 PRRSV 순환 위험이 증가하는 것으로 알려져 있다. 본 연구에서는 이유 시 혼합(MIX)을 시행한 세 농장과 이유 시 모두 전입/전출(AIAO)을 시행한 세 농장의 돼지를 대상으로 시료를 채취하였다. MIX는 저체중 자돈을 2주 동안 별도 시설에 다시 넣고 이후 배치에서 새로 이유한 자돈과 함께 자돈사로 옮기는 것을 포함한다. 각 농장의 네 배치의 돼지로부터, 이유부터 30kg까지 세 번씩 구강액 샘플을 채취하여 PRRSV 및 PRRSV 항체 검사를 실시했다. 이유 시 혼합(MIX)을 시행한 무리는 AIAO를 시행한 무리에 비해 구강액에서 PRRSV 검출 위험이 8배 높았다. MIX 무리의 8개 배치에서 채취한 총 41개의 구강액 샘플과 AIAO 무리의 2개 배치에서 채취한 5개의 구강액 샘플에서 PRRSV 양성 반응이 나왔다. 이유돈의 구강액 샘플에서 PRRSV ELISA S/P 비율은 AIAO 무리의 대부분 배치에서
부산의 사육돼지에서 '일본뇌염 바이러스(JEV)'와 '돼지 파보바이러스(PPV)'의 항체 보유율을 조사하기 위해 2024년 1월부터 11월까지 9개 돼지 농장에서 439개의 혈액 샘플을 수집했다. JEV의 전체 항체 보유율은 15.4%로 매우 낮은 백신 접종률을 나타냈다. JEV 항체 보유율은 계절과 지역에 따라 상당히 달랐으며 모돈(39.3%)에서 비육돈(11.6%)에 비해 더 높은 항체 보유율이 관찰되었고 가을(34.7%)에 최고조에 달했다. 이와 대조적으로 PPV의 전체 항체 보유율은 98.6%로 매우 높은 백신 접종률을 나타내었다. PPV 항체 보유율은 모든 그룹과 계절에 걸쳐 지속적으로 높았으며, 이는 백신 접종이 모돈을 대상으로 집중적으로 이루어지기 때문으로 판단된다. 모돈의 항체 보유율은 100%였다. 지역 및 농장 단위에서 JEV 항체 보유율의 차이는 JEV에 대한 더욱 강화된 백신 접종 캠페인의 필요성을 시사한다. 본 연구는 JEV 및 PPV 발생 위험을 완화하고, 공중 보건 안전을 보장하며, 양돈 농가의 경제적 손실을 최소화하기 위해 강화된 백신 접종 전략, 정기적인 질병 모니터링, 그리고 환경 관리의 중요성을 강조한다. [논문 원문(바로보
돼지 써코바이러스 2형(porcine circovirus type 2, PCV2) 감염은 림프기관에서 림프구 소실 및 림프구 소엽의 조직구 대체와 같은 병리학적 특징적 병변을 유발한다. PCV2에 자연 감염된 돼지에서는 '괴사성 림프절염'도 관찰될 수 있다. 2003년부터 2010년까지 제주도에서 '돼지써코바이러스 연관 질병(PCVAD)'에 감염된 돼지 20마리(6.4%)에서 '괴사성 림프절염'이 관찰되었다. 가장 두드러진 조직병리학적 병변은 경증에서 중증의 '응고괴사'였다. 조직구 및 다핵거대세포 내에서도 세포질 내 바이러스 봉입체가 발견되었다. 출혈 및 혈관 내 혈전증을 특징으로 하는 현저한 혈관 손상이 있었다. 면역조직화학 검사 결과, 괴사성 림프절염을 동반한 PCVAD 돼지에서 병리학적 병변이 더 심한 것으로 나타났다. 괴사성 림프절염을 동반한 PCVAD 돼지에서 PCV2 항원 발현이 더 강하게 나타났다. 본 연구 결과는 이러한 돼지에서 림프구 괴사는 과도한 PCV2 항원 부담으로 인한 혈전을 동반한 혈관 손상과 밀접한 관련이 있음을 시사한다. 따라서 중증 PCV2 감염 돼지에서 괴사성 림프절염은 PCVAD의 특이 병변 유형 중 하나로 고려되어야 한다
ASFV-G-ΔI177L은 상용 백신에 도입된 ASF 바이러스(ASFV) 약독화 생독 균주이다. 본 연구는 임신모돈에서의 안전성과 생체 내 유전적 안정성을 조사하였다. 임신모돈 2마리에 ASFV-G-ΔI177L을 접종한 결과, 한 마리에서 중등도의 ASF 관련 임상증상이 나타났다. 번식성적 측면에서, 자돈의 43%가 사산되었으며 생존한 자돈들은 ASF 특이적 임상증상을 보였고 바이러스혈증이 발생하였다. 연구 종료 시점까지 생존한 비율은 17%에 불과했다. 돼지를 통한 전파 과정에서 ASFV-G-ΔI177L은 3차 및 4차 전파 시 심각한 ASF 특이적 임상증상과 함께 바이러스혈증 증가를 동반하는 등 병원성 회복을 보였다. 전체 유전체 시퀀싱을 통해 C257L 돌연변이가 증식 적합성과 독성 증가의 잠재적 원인으로 확인되었다. 본 연구 결과는 ASFV-G-ΔI177L이 유전적으로 안정적이지 않아 ASF 백신 사용에 안전하지 않음을 보여주며, ASF 백신 후보물질은 임신 동물에서 안전성 시험을 거쳐야 함을 시사한다. [논문 원문(바로보기), African swine fever virus vaccine strain Asfv-G-∆I177l reverts to vir
PRRS는 대한민국의 돼지산업에 막대한 경제적 손실을 초래하는 전염병이다. PRRS 바이러스(PRRSV) 유형에 대한 감시는 맞춤형 방제 조치를 수립하는 데 중요하다. 본 연구는 PRRSV의 다양성의 정도를 파악하는 것이다. 이를 위해 2018년부터 2022년까지 5,062개의 혈청 및 조직 샘플을 수집하였다. PRRSV의 ORF5 서열 분석 결과, subgroup A(42%) 우세했으며, 이어서 리니지 1(21%), 리니지 5(14%), 리니지 한국 C(LKC, 9%), 리니지 한국 B(LKB, 6%), subtype 1C(5%) 순으로 나타났다. 고병원성 리니지 1(NADC30/34/MN184)과 리니지 8도 검출되었다. 이들 바이러스는 일반적으로 변이하거나 다른 바이러스와 재조합한다. PRRSV-1(유럽형)에서는 ORF5 및 비구조 단백질 2(NSP2) 결실 패턴의 변이가 적었다. PRRSV-2(북미형)에 속하는 여러 균주는 NSP2 결실 및 ORF5 서열에서 차이를 보였다. PRRSV-1 subtype 1C 및 PRRSV-2 리니지 5와 비슷한 '백신 유사 분리주(Similar vaccine-like)'도 발견되었다. 이 바이러스는 현장에서 독립적으로
ASF는 한국의 돼지산업에 중대한 사회경제적 타격을 주는 질병이다. 본 연구는 ASF 발생이 보고된 농장에서 감염된 것으로 보이는 돼지의 ASF 바이러스(ASFV) 혈청양성률을 확인하는 것을 목표로 했다. 이를 위해 한국에서 발생한 ASF 발생 사례(2019–2024년)에서 총 2232개의 혈청을 수집하였다. ASFV 항체 검출을 위해 두 가지 '효소결합면역흡착분석법(ELISA)' 키트를 사용했으며, 세계동물보건기구(WOAH)의 육상동물 진단검사 및 백신 매뉴얼에서 권장하는 방법에 따라 '면역과산화효소검사(IPT)'를 확인 검사로 실시하였다. 또한, 야생멧돼지 개체군 내 ASF 발생 집중 지역을 파악하고, 해당 집중 지역과 ASF 항체 양성 가축 농장 간의 공간적 관계를 평가하기 위해 DBSCAN(Density-Based Spatial Clustering of Applications with Noise) 모델을 이용한 공간 클러스터링을 수행하였다. 그 결과, 항체는 2020년 화천에서 처음 검출되었으나, 2024년까지 ASFV에 대한 검출 가능한 항체를 보유한 돼지는 1.43%에 불과했다. 비록 이 비율은 여전히 낮지만, 항체 양성 돼지의 수는 점차 증가하고
본 연구의 목적은 만성적 '유행성폐렴(EP)' 문제가 있고 도축 시 '마이코플라스마 유사 병변(mycoplasma-like lesions)'이 많이 발생하는 농장에서 '마이코플라스마 하이오뉴모니아(M hyo)'를 제어하기 위해 음용수에 '틸바로신(tylvalosin, ECO Animal Health)'을 첨가한 효능을 조사하는 것이었다. 스페인 남동부에 위치한 모돈 4,000마리 규모의 한 농장에서, 동일 연령의 돼지 1,500마리를 무작위로 두 그룹으로 나누었다. 900마리는 투여군(TG)에, 600마리는 비투여 대조군(CG)에 배정했다. 투여군은 이유기(생후 21일~28일)에 틸바로신(2.5mg/kg 체중)을 음수에 섞어 7일 동안 투여했고, 육성비육사으로 옮길 때(생후 63일~70일)에는 두 번째 투여를 실시했다. 투여군에서는 대조군에 비해 폐 병변의 심각도(P<0.001)와 병변을 보이는 개체수(P<0.001)가 유의하게 감소했다. 투여군에서는 '평균 일당 증체량(ADG)'이 증가했고, 평균 출하일령이 감소했다. 또한, 평균 도체 중량은 낮았지만, 균일성은 향상되었다. 투여군에서 특징적인 EP 병변이 있는 폐 샘플에서 q-PCR로 M hyo
클로스트리듐 퍼프린젠스(Clostridium perfringens; 이하 C. perfringens)균은 토양과 동물 및 인간의 장 내용물에 풍부하게 존재한다. 돼지에서는 설사, 출혈성 및 괴사성 장염과 같은 소화기 질환을 유발하는 병원균이다. 본 연구에서는 설사 증상을 보이는 자돈에서 11개의 C. perfringens 분리주를, 건강한 자돈에서 18개의 분리주를 분리했다. 모든 C. perfringens 분리주는 다중 PCR 검사를 통해 유형 A로 확인되었다. β2 독소 유전자는 C. perfringens 분리주 29개 중 27개에서 검출되었다. 설사 자돈 분리주에서는 81%(9/11), 건강한 자돈 분리주에서는 100%(18/18) 확인되었다. 모든 유전자의 염기서열은 동일했다. 결론적으로, C. perfringens의 β2 독소 유전자는 한국 자돈에서 설사 발생 여부와 관계없이 널리 분포되어 있었으며, 장 질환과의 명확한 연관성은 관찰되지 않았다. 그러나 C. perfringens의 β2 독소 유전자는 건강한 자돈에서 독성을 나타낼 수 있으며, 장 병원성을 유발할 수 있다. 자돈에서 분리된 29개의 C. perfringens 균주에 대한 PFGE(pu
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